上海金畔生物科技有限公司代理New England Biolabs(NEB)酶试剂全线产品,欢迎访问官网了解更多产品信息和订购。
产品信息
PCR 克隆试剂盒提供优化的克隆预混液(其中配有专有的连接增强剂)和线性载体。该线性载体利用独特的机制抑制背景菌落生长,使背景值降为最低。本试剂盒能简单、快速克隆各种 PCR 产物,包括具有校读功能的聚合酶产生的平末端扩增子(如:Q5®)和无校对功能的聚合酶产生的单碱基突出末端扩增子(如 Taq 或 Taq 预混液:OneTaq®、LongAmp® Taq)。克隆预混液中包含有末端修复成份,可在连接反应步骤前进行末端平齐化,因此,无论扩增子是何种末端都能完成有效连接。此外,使用本试剂盒,PCR 产物无需纯化,PCR 引物也无需经过 5´-磷酸基团修饰。有关试剂盒的工作原理,请观看视频。
具有极强的灵活性:无论有没有 5´ 磷酸、是否进行纯化,任何 DNA 聚合酶制备的扩增子都能进行克隆!
- 产品类别:
- DNA Assembly, Cloning and Mutagenesis Kits Products
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试剂盒组成
本产品提供以下试剂或组分:
NEB # 名称 组分货号 储存温度 数量 浓度 -
E1202S Multi-temperature Linearized pMiniT™ 2.0 Vector N0312AVIAL -20 1 x 0.02 ml 25 µg/ml Cloning Analysis Forward Primer S1512AVIAL -20 1 x 0.035 ml 100 µM Cloning Analysis Reverse Primer S1513AVIAL -20 1 x 0.035 ml 100 µM Amplicon Cloning Control N0555AVIAL -20 1 x 0.01 ml 15 µg/ml pUC19 Vector N3041AVIAL -20 1 x 0.025 ml 50 pg/µl Cloning Mix 1 M1015AVIAL -20 1 x 0.08 ml 2.5 X Cloning Mix 2 M1016AVIAL -20 1 x 0.02 ml 10 X NEB® 10-beta/Stable Outgrowth Medium B9035SVIAL 4 1 x 25 ml Not Applicable NEB® 10-beta Competent E. coli (Cloning Efficiency) C3018AVIAL -80 20 x 0.05 ml Not Applicable
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特性和用法
存储注意事项
- The kit is shipped on dry ice. Upon arrival, store the competent cells (in the large exterior box) at -80°C, the components in the small interior box at -20°C and the NEB™ 10-beta/Stable Outgrowth Medium at room temperature or 4°C.
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优势和特性
Features
- 含 SP6 和 T7 启动子,便于体外转录
- 从含氨苄青霉素抗性的基因中去除 BsaI 位点(便于 Golden Gate 克隆)
- 可以轻松克隆所有类型的 PCR 产物,包括平末端和 TA 末端
- 克隆速度快,连接仅需 5 分钟
- 筛选简单,几乎没有克隆背景,不需要蓝白斑筛选
- 无需纯化步骤,节约时间
- 两侧的限制性内切酶酶切位点方便亚克隆,包含两种单酶切选择
- 提供分析引物,便于进行下游菌落 PCR 筛选或测序
- 试剂盒包含 1 kb 对照扩增子和线性载体及一次用量的 E. coli 感受态细胞
- 比其它商业化产品保质期长(12 个月)
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注意事项
- NEB PCR 克隆试剂盒包含的试剂足以进行 20 次 10 μl 的克隆反应。试剂盒还提供引物,便于进行下游菌落 PCR 筛选和/或测序。
- NEB PCR 克隆试剂盒包含的试剂足以进行 20 次 10 μl 的克隆反应。试剂盒还提供引物,便于进行下游菌落 PCR 筛选和/或测序。
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参考文献
- Wang, Y. et al. (2004). Nucleic Acids Research. 32, 1197-1207.
- Heurgue-Hamard, V. et al. (2000). The EMBO Journal. 19, 2701-2709.
- Tenson, T. et al. (1999). Journal of Bacteriology. 181, 1617-1622.
操作说明、说明书 & 用法
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操作说明
- Ligation Protocol for NEB PCR Cloning Kit
- Transformation Protocol for NEB PCR Cloning Kit
- Plating Protocol for NEB PCR Cloning Kit
- Insert Screening Protocols for NEB PCR Cloning Kit
- RNA Synthesis of Cloned Insert Transcripts
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说明书
产品说明书包含产品使用的详细信息、产品配方和质控分析。- manualE1202_E1203
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使用指南
- NEB PCR Cloning Kit (NEB #E1202/E1203) Tips
- Tips for the Monarch PCR & DNA Cleanup Kit
FAQs & 问题解决指南
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FAQs
- How does the NEB® PCR Cloning Kit work?
- How can the cloning vector work with both blunt-ended amplicons and single-base overhang-containing amplicons?
- Do these polishing components present in the master mix affect my cloning efficiency if my insert already has blunt ends?
- Do my inserts have to possess 5´ phosphates?
- Can the cloning kit be used for inserts that are not necessarily PCR amplicons?
- Can the cloning kit be used with inserts containing 5´ or 3´ overhangs greater than the single-base overhang achieved by PCR with Taq DNA polymerase?
- Can I use the NEB PCR Cloning Kit featuring pMiniT 2.0 for Golden Gate Assembly?
- Does the PCR product need to be purified?
- Can I use a different competent E. coli strain than the provided NEB 10-beta strain?
- How can I maximize the number of transformants?
- Can I scale down the reactions to use less vector?
- Are there limits regarding the size of inserts that can be cloned?
- Are the NEB 10-beta Competent E. coli (Cloning Efficiency) provided in the kit the same cells as NEB 10-beta Competent E. coli (High Efficiency)?
- How can I determine if my NEB 10-beta cells are competent?
- Can Cloning Mix 1 and Cloning Mix 2 be mixed together before adding them to the ligation reaction?
- Where are the +1 transcription positions for the SP6 and T7 promoters for in vitro transcription and translation located?
- What is the difference between the original pMiniT and the pMiniT 2.0 linearized vector backbone now provided in the kit?
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实验技巧
1. 插入片段和载体的比例为 3:1:插入片段与载体的比例越高,所得菌落会越少。这是因为插入片段可能连接到载体的两端,从而阻碍对扩增子插入片段的克隆。
2. 操作流程:此操作流程经全面优化,背景很少。如果无意中偏离了操作流程(例如,延长连接温育时间、过度浓缩复苏菌液),可以通过用较少的复苏菌液(< 50 µl)涂板改善;涂板时使用太多的细胞可能会增加背景,并导致菌落 PCR 出现问题。如果需要更多菌落,请将 50 µl 复苏菌液涂布到多个平板上。
3. 终止连接反应很重要:如果您希望将连接反应液贮存起来,以便过一段时间进行转化实验,请确保您的冰箱温度足够低(-20℃),可以将连接反应液冻起来。或者,可用干冰/酒精浴快速冷冻样本,然后将样本转移到 -20℃ 条件下。如果冷冻贮存的连接样本仍保持液态,这可能导致载体骨架发生进一步低水平的连接。这种情况下,可以使用更少的复苏菌液(< 50 µl)涂板。
4. 不要在室温下孵育转化平板。室温下细胞生长速度缓慢,会增加背景菌落的数量。
5. 最后将克隆预混液 1 和 2 添加到反应体系中。如果试图通过制备水、连接预混液和 pMiniT 的混合液,然后将其分装,再添加 DNA 插入片段来节省时间。这会让 pMiniT 重新环化,从而导致克隆效率降低,因为连接在添加扩增子之前已开始。