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产品信息
Taq DNA 聚合酶是一种热稳定 DNA 聚合酶,具有 5´→3´ 聚合酶活性(1,2,3)和 5´ 结构特异性核酸内切酶活性(4,5)。
Quick-Load® Taq 2X 预混液是经过优化的即用型溶液,包含 Taq DNA 聚合酶、dNTP、MgCl2、KCl、示踪染料和稳定剂。预混液中存在两种常用的示踪染料(即橙黄 G 和二甲苯蓝 FF)用于 DNA 凝胶电泳,可让预混液呈现绿色,并可直接将 PCR 产物上样到琼脂糖凝胶上。在 1% 的 1X TBE 琼脂糖凝胶电泳上,二甲苯蓝 FF 的迁移率大约与 4 kb 的片段相同,橙黄 G 的迁移率大约与 50 bp 的片段相同。所含示踪染料的量并不会遮盖共迁移的 DNA 条带。Quick-Load Taq 2X 预混液非常适合应用于常规 PCR,模板可以是纯 DNA 溶液、菌落和 cDNA 产物。可用于扩增不超过 4 kb 的复杂基因组 DNA 或不超过 5 kb 的 Lambda DNA。
重点
- 反应稳定可靠
- 适用于多种模板
产品来源
大肠杆菌菌株,携带有克隆自水生嗜热菌(Thermus aquaticus)YT-1 的 Taq DNA 聚合酶基因。
- 产品类别:
- Master Mixes Products,
- Taq DNA Polymerase Products
- 应用:
- Polymerases for DNA Manipulation,
- Multiplex PCR,
- Specialty PCR,
- Routine PCR,
PCR
-
产品组分信息
本产品提供以下试剂或组分:
NEB # 名称 组分货号 储存温度 数量 浓度 -
M0271L -20 Quick-Load® Taq 2X Master Mix M0271SVIAL -20 10 x 1.25 ml 2 X Magnesium Chloride (MgCl2) Solution B9021SVIAL -20 3 x 1.5 ml 25 mM
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特性和用法
1X 预混液组分
10 mM Tris-HCl
0.05% Tween® 20
0.024% Orange G
0.003% Xylene Cyanol
33 units/ml Taq DNA Polymerase
50 mM KCl
1.5 mM MgCl2
0.2 mM dATP
0.2 mM dCTP
0.2 mM dGTP
0.2 mM dTTP
5% Glycerol
0.08% IGEPAL® CA-630
pH 8.6 @ 25°C热失活
否
分子量
理论上的: 94000 道尔顿
5′ – 3′ 核酸外切酶
Yes
3′ – 5′ 核酸外切酶
No
链置换
No
单位活性检测条件
1X ThermoPol® 反应缓冲液、200 µM dNTP(含 [3H]-dTTP)和 15 nM 已结合引物的 M13 DNA。
单位定义:
1 单位是指在 75℃ 条件下,30 分钟能使 10 nmol 的 dNTP 掺入酸不溶物所需的酶量。 -
相关产品
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- dNTP 混合液
- dNTP 套装
- 标准 Taq 反应缓冲液套装
- 标准 Taq 反应缓冲液(无 Mg2+)
单独销售的组分
- MgCl2 溶液
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注意事项
- 可在 -20℃ 下长期储存。当 -20℃ 储存时,Quick-Load Taq 2X 预混液反复冻融 15 次仍保持稳定。
- Quick-Load Taq 2X 预混液在 4℃ 下可稳定保存一周。因此,为了便于频繁使用,可分装储存在 4℃ 条件下。
- Quick-Load Taq 2X 预混液的工作液浓度为 1X,并加入 DNA 模板和引物,总反应体积为 25 或 50 μl。
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参考文献
- Chien, A., Edgar, D.B. and Trela, J.M. (1976). Bact.. 127, 1550-1557.
- Kaledin, A.S., Slyusarenko, A.G. and Gorodetskii, S.I. (1980). Biokhimiya. 45, 644-651.
- Lawyer, F.C. et al. (1993). PCR Methods and Appl.. 2, 275-287.
- Longley, M.J., Bennett, S.E. and Mosbaugh D.W. (1990). Nucleic Acids Res.. 18, 7317-7322.
- Lyamichev, V., Brow, M.A. and Dahlberg, J.E. (1993). Science. 260, 778-783.
- Saiki R.K. et al. (1985). Science. 230, 1350-1354.
- Powell, L.M. et al. (1987). Cell. 50, 831-840.
- Sun, Y., Hegamyer, G. and Colburn, N. (1993). Biotechniques. 15, 372-374.
- Sarkar, G., Kapelner, S. and Sommer, S.S. (1990). Nucleic Acids Res.. 18, 7465.
操作说明、说明书 & 用法
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操作说明
- Protocol for Quick-Load® Taq 2X Master Mix
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使用指南
- Activity of Restriction Enzymes in PCR Buffers
- Guidelines for PCR Optimization with Taq DNA Polymerase
- Guidelines for PCR Optimization with Thermophilic DNA Polymerases
工具 & 资源
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选择指南
- DNA Polymerase Selection Chart
- Thermophilic DNA Polymerases
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Web 工具
- Tm Calculator
FAQs & 问题解决指南
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FAQs
- What ends will my PCR products have?
- How should I determine the appropriate annealing temperature for my reaction?
- What should the final primer concentration be in my PCR?
- What are the properties of this polymerase (fidelity, product ends, max amplicon, modified base incorporation, etc.)?
- What are the stability and storage requirements for NEB’s Taq and OneTaq DNA Polymerases?
- Can Taq/OneTaq® DNA Polymerases be used for nick translation?
- How can I optimize my PCR when using Taq DNA Polymerase?
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问题解决指南
- PCR Troubleshooting Guide
- Taq PCR Kit Troubleshooting Guide
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实验技巧
- 您知道吗?对于大多数 Taq 反应,当延伸温度为 68℃ 时,会发生更高效、更稳定地扩增。